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报告基因细胞系

报告基因细胞系(Reporter Cell Lines)是一类通过引入特定报告基因,用于实时、定量反映细胞内信号变化和基因转录活性的功能性细胞模型。该类细胞系广泛应用于基因表达调控研究、信号通路解析、蛋白定位追踪、受体-配体相互作用分析以及高通量药物筛选与新药靶点验证等多个领域,是现代分子与细胞生物学研究中不可或缺的工具。
艾迪基因依托成熟的基因过表达实验体系和基因敲入技术平台,已构建多种成熟稳定的报告基因细胞系,覆盖多条经典信号通路和热门肿瘤治疗靶点基因,例如NF-κB、NFAT、GPCR、cAMP等通路,和EGFR、PIK3CA、KRAS等靶点基因。报告系统涵盖 GFP、RFP、荧光素酶(Luciferase)、HIBIT等多种报告基因或tag,以满足不同实验平台和研究方向的需求。

服务详情

细胞类型 各种细胞类型,包括肿瘤细胞系、正常体细胞系、干细胞和原代细胞等。
服务类型 GFP、RFP、荧光素酶(Luciferase)、HIBIT等报告基因或tag
交付标准 基因过表达多克隆细胞1株(2管细胞,1×10^6/管)/基因敲入单克隆细胞1株(2管细胞,1×10^6/管)
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技术原理

过表达型报告基因细胞系通过将报告基因置于特定启动子或信号通路响应元件控制下,稳定整合至细胞基因组。过表达型报告基因细胞系具有信号响应灵敏、检测窗口宽、构建效率高的特点,适合用于信号通路激活/抑制研究、高通量药物筛选及功能初筛实验。

敲入型报告基因细胞系依托HES-KI、Flash-KI等基因敲入技术平台,将报告基因精确插入至内源基因位点或其调控区域,使报告信号在内源表达背景下产生,能够更真实地反映生理状态下的基因调控与信号变化,适用于机制研究、精细功能分析及结果验证实验
 

成功案例

本案例采用AsCas12a核糖核蛋白(RNP)与EGFP供体质粒共转染K562细胞,通过HES-KI(高效敲入)策略实现了EGFP基因的定点整合。在未使用抗性筛选的条件下,多克隆细胞的敲入效率达到37%,且EGFP的插入未对细胞生长产生明显影响。进一步建立的单克隆细胞株经连续15代传代培养后,EGFP mRNA仍保持稳定表达,表明基因整合效果持久可靠,实验结果如下:
① 多克隆细胞的敲入效率达到37%
K562细胞
EGFP基因敲入K562细胞
② K562 EGFP-KI细胞和WT细胞单克隆细胞株倍增时间差异不显著,EGFP插入后不影响K562细胞生长。
EGFP插入后不影响K562细胞生长
③ 不同K562 EGFP-KI单克隆细胞株EGFP mRNA表达量差异不显著,EGFP-KI单克隆均一性好。
EGFP-KI单克隆均一性好
④ K562 EGFP-KI不同单克隆细胞株经过15代传代培养,EGFP mRNA表达量稳定
EGFP mRNA表达量稳定
本案例采用CRISPR/Cas9核糖核蛋白(RNP)与EGFP供体质粒共转染CHO-K1细胞/293T,通过HES-KI(高效敲入)策略实现了EGFP基因的定点整合。在未使用抗性筛选的条件下,多克隆细胞的敲入效率达到55%,293T细胞多克隆细胞的敲入效率达到68%且EGFP的插入未对细胞生长产生明显影响。
① 多克隆细胞的敲入效率

293T

293T-EGFP

293T

CHO-K1

CHO-K1-EGFP

CHO-K1
②随着传代次数增加,CHO-K1/293T-EGFP细胞EGFP mRNA表达量保持稳定表达
CHO-K1/293T-EGFP细胞EGFP mRNA表达量保持稳定表达

将CopEGFP基因序列克隆至慢病毒表达载体pLV3-CAG-MCS-P2A-Puro中,包装生产高滴度慢病毒颗粒,并感染人黑色素瘤细胞系A375。通过荧光显微镜直接观察感染后细胞中EGFP报告基因的表达情况,评估过表达效率。

注:本案例中使用的A375-copEGFP细胞为艾迪基因公司提供的现货细胞(货号:EDC01053),保障实验的快速开展与可重复性。copGFP过表达细胞现货库

图1:pLV3-CAG-MCS-P2A-Puro骨架载体图谱

图2:A375细胞明场图片

图3:A375-copEGFP细胞图片

本案例采用艾迪基因研发的Flash-KI基因敲入技术平台,在HEK293T细胞GAPDH基因C端精准敲入EGFP报告基因。在未使用抗性筛选的条件下,多克隆细胞的敲入效率达到88%,与HES-KI系统相比,Flash-KI系统介导的重要基因敲入效率提高20%。

68% EGFP-KI in HEK293T cell pool by electroporation

88% EGFP-KI in HEK293T cell pool by Flash-KI

本案例采用艾迪基因研发的Flash-KI基因敲入技术平台,在A19细胞T1R1基因C端精准敲入EGFP报告基因。在未使用抗性筛选条件下,常规CRISPR/HDR方法敲入效率仅为0.2%,这与在难编辑细胞系中常见的低于1%的效率一致。然而,使用Flash-KI敲入效率从0.2%提高到46%,整整230倍的提升。

0.2% EGFP-KI in A9 cell pool by Flash-KI without KI enhancer drug

846% EGFP-KI in A9 cell pool by Flash-KI with KI enhancer drug

 

Advantage and Characteristic

Optimazied Strategy
We have create a unique sgRNA Design Logic
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参考文献

CLASH enables large-scale parallel knock-in for cell engineering

CLASH(Cas9-Linked Adaptor Synthesis for Homology-directed repair)技术能够在大规模细胞工程中实现高效的基因敲入。该方法结合了Cas9蛋白和适配子合成,使得在多种细胞类型中进行平行敲入成为可能。通过在DNA修复过程中提供特定的适配子来提高同源重组修复(HDR)的效率,从而大大提升基因敲入的成功率。该技术展示了在细胞工程和基因编辑中的巨大潜力,特别是在需要多基因修改的复杂生物工程应用中。

Modulation of cell cycle increases CRISPR-mediated homology-directed DNA repair

该研究探讨了通过同步细胞周期来增强CRISPR介导的同源重组修复(HDR)效率的方法。使用小分子调节细胞周期,在各种细胞系中实现了1.2-1.5倍的KI效率提高。研究还展示了该方法在动物胚胎中的应用,显著提高了猪胚胎中的KI频率。这一方法通过调节细胞进入有利于HDR的周期阶段,从而提高了基因敲入的成功率,为CRISPR基因编辑提供了新的优化策略。

FAQ

什么是报告细胞系?
报告细胞系是通过稳定表达报告基因,用于指示特定基因转录活性或信号通路状态的功能性细胞模型。
常见报告系统包括荧光素酶(Luciferase)和荧光蛋白(如 GFP、RFP),可根据实验需求选择不同检测方式。
可根据研究目标定制特定信号通路、启动子或报告基因组合的报告细胞系。
经验证的稳定报告细胞系在多代传代中可保持一致的信号响应,适用于定量和比较分析。
主要应用于信号转导机制研究、基因调控分析、受体-配体相互作用研究以及药物筛选与功能验证。

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