【干货分享】CRISPR文库筛选常见问题及解决方法--慢病毒包装与转染



CRISPR/Cas9文库筛选技术可实现全基因组范围的高通量筛选,其针对每个基因设计3-10条sgRNA,利用芯片一次性合成数万条覆盖整个基因组的sgRNA探针。

通过克隆构建载体库,经慢病毒包装后以低感染复数感染宿主细胞,使得理论上每个细胞整合一条sgRNA,构建获得覆盖全基因组的基因敲除细胞池;经过筛选后,提取基因组并针对整合的sgRNA序列进行高通量测序,分析筛选前后sgRNA的丰度变化,进而找出其对应候选基因。

在CRISPR文库筛选实验过程中,最理想的结果就是除了药物,其他刺激的影响越小越好,因此病毒必须高滴度、高纯度、无污染。

以下整理了一些关于CRISPR文库筛选中慢病毒包装与转染的常见问题及解决方法,希望对你有帮助。
01
在CRISPR文库筛选实验过程中,慢病毒的转染效率低
原因1:细胞铺板过密
 解决方法:铺板密度为4–5 x 106 cells/10 cm培养皿,如果细胞分裂太快,可适当降低铺板细胞数;在汇合度50–80% 时进行实验。

 原因2:细胞检测转染效率的时间与转染间隔太短
 解决方法:转染后48小时目的基因才能达到最大表达量,此时再进行转染效率测试。

 原因3:病毒滴度太低
 解决办法:在不使用超速离心的情况下浓缩病毒至100倍。

 原因4:在转染时,细胞活性过低
 解决办法:
(1)病毒包装培养基可能影响细胞生长; 稀释病毒上清或者减少细胞接触病毒时间。
(2)正确使用polybrene: 使用滴定的方法确定最佳用量,或缩短处理时间。
(3)在转染前先调整好细胞状态。
02
在CRISPR文库筛选实验过程中,包的慢病毒滴度低 (<105 cfu/ml)
原因1:太早收毒
解决方法:应在转染后48–72 hr 收毒。

原因2:未使用Polybrene,或者不是最佳浓度
解决方法:转染时加入4 μg/ml polybrene或者优化最佳浓度(2–12 μg/ml)。

原因3:病毒冻融多次
解决办法:每一次冻融滴度会下降2-4倍,因此应减少冻融次数。

原因4:滴定测量滴度时没有使用最佳筛选浓度
解决办法:在检滴度前应确定好细胞的抗性杀伤曲线,以确定最佳筛选浓度。
03
转染时细胞产生毒性了怎么办?
原因1:MOI过高
解决办法:滴定法确定最佳病毒用量,稀释病毒。

原因2:Polybrene的毒性导致
解决办法:降低或优化polybrene浓度; 减少感染时间。

原因3:包病毒的细胞上清或者培养基对细胞有毒性
解决办法:使用培养基稀释病毒和收毒。
04
细胞转染Cas9病毒后死亡或者生长缓慢怎么办?
原因:细胞对Cas9蛋白表达敏感
解决办法:使用目的细胞滴定Cas9病毒以确保一个病毒进入一个细胞,或者使用另外一种对Cas9不敏感的细胞。
以上就是关于CRISPR文库筛选中慢病毒包装与转染的常见问题以及解答,艾迪基因提供一站式文库筛选服务,主打性价比高、种类最全,服务最好。现还推出一系列慢病毒文库,下单即可启动筛选,帮您大大节省实验周期。


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